Serie experimental KST•4 de febrero de 2025

Recuento de CFU mediante dilución en serie y tratamiento de oxígeno disuelto con nanoburbujas

Serie de experimentos de I+D de PowrHouse (Parte 1)

Por Jeremy Pfeiffer, CIO de Kairospace Technologies Inc. y Kevin Crouch, VP de Cultivo en PowrHouse

Objetivo

Este estudio evaluó el impacto de los niveles de oxígeno disuelto (OD) en el crecimiento microbiano mediante la medición de unidades formadoras de colonias (CFU) en soluciones de cultivo. Se compararon tres grupos experimentales, cada uno expuesto a un nivel diferente de OD mediante la tecnología de nanoburbujas de Kairospace, frente a un grupo de control sin oxígeno adicional.

El objetivo era comparar niveles de oxigenación para el cultivo singánico—un enfoque que integra sales de fertilizantes sintéticos con inoculantes de microorganismos orgánicos beneficiosos para mejorar la eficiencia del riego, la salud de las plantas y la absorción de nutrientes.

Qué mide este ensayo

Se trata de un único ensayo preliminar: un inoculante, un medio de cultivo, una incubación y un solo juego de placas por grupo, en un tanque de mezcla y no en suelo. Un recuento de colonias mide lo que llega a crecer en ese medio bajo esas condiciones, que es una fracción de lo que está presente; por tanto es un indicador de proliferación cultivable y no un perfil de la comunidad. Tres niveles de oxígeno y un solo ensayo no permiten localizar un óptimo ni trazar una curva dosis-respuesta, y la respuesta que se observa a continuación resulta ser no monotónica. El trabajo pendiente que se nombra en la conclusión — secuenciación del ARNr 16S y ensayos de ATP — es el que permitiría determinar qué cambió en la comunidad.

Materiales y métodos

Materiales

  • Solución inoculante: GreenGro MadRoots Todo en Uno + Aminoácidos Verdes
  • Sistema de tratamiento: Kairospace AGPACK 40 (Generador de nanoburbujas)
  • Software de análisis: OpenCFU AI (Conteo Automatizado de Colonias)
  • Equipo de laboratorio: Solución salina estéril, placas de agar nutritivo, incubadora (37 °C), micropipetas estériles.

Configuración experimental

Establecimos tres grupos de prueba distintos en función de los niveles de oxigenación:

  • Grupo de control: Oxígeno disuelto ambiental (8 ppm) – Sin tratamiento.
  • Grupo de prueba 1: Alto contenido de oxígeno disuelto (24 ppm) – Tratamiento con nanoburbujas.
  • Grupo de prueba 2: Oxígeno disuelto medio (12 ppm) – Tratado con nanoburbujas.

Procedimiento

  1. Dilución en serie: 1 ml de solución de cultivo se diluyó en pasos de solución salina estéril (10-1; 10-2; etc.) para asegurar colonias contables.
  2. Siembra: Se extendió 1 ml de cada dilución sobre placas de agar nutritivo.
  3. Incubación: Las placas se incubaron a 37 °C durante 24-48 horas.
  4. Recuento: Las colonias se contaron utilizando el software OpenCFU (rango de 30 a 300 colonias por placa).

Resultados y cálculos

La siguiente tabla detalla el número de colonias observadas y los parámetros químicos para cada grupo.

GrupoNivel de ODpHCERecuento de CFUDilución
Control8 ppm5.63.29110-2
Grupo de prueba 124 ppm (Alto)5.63.212710-2
Grupo de prueba 212 ppm (Medio)5.63.224210-2

*Cálculo de CFU basado en un factor de dilución de 10-2 y un volumen de siembra de 1 mL.

Análisis y observaciones

1. Alto nivel de oxígeno disuelto (24 ppm): ¿estrés oxidativo?

Placa de agar del grupo de 24 ppm de oxígeno disuelto: colonias más dispersas, predominantemente de tamaño mediano a grande.
24 ppm: más dispersa que la placa de 12 ppm, con colonias predominantemente de tamaño mediano a grande.

Recuento de CFU: 12.700
Este grupo mostró un crecimiento sustancial, pero menor que el del grupo de 12 ppm. Las colonias eran predominantemente de tamaño mediano a grande.

Interpretación: Si bien el oxígeno favorece la proliferación, el nivel más alto ensayado devolvió menos colonias que el intermedio, de modo que la respuesta no siguió aumentando con el oxígeno. Una lectura compatible con ese resultado es el estrés oxidativo: un entorno que favorece a los organismos tolerantes al oxígeno y limita a los anaerobios obligados o a los organismos beneficiosos sensibles. Un recuento de CFU en un solo medio no permite confirmarlo: menos colonias aquí significa un recuento cultivable más bajo, no un cambio medido en la composición de la comunidad.

2. Oxígeno disuelto medio (12 ppm): el recuento más alto de los tres.

Placa de agar del grupo de 12 ppm de oxígeno disuelto: la placa más densa, con una amplia variedad de tamaños de colonia.
12 ppm: la placa más densa de las tres y el rango más amplio de tamaños de colonia.

Recuento de CFU: 24.200 (el más alto de los tres niveles ensayados)
Este grupo presentó el mayor número de colonias y la mayor variedad de tamaños en la placa (pequeñas, medianas y grandes).

Interpretación: De los tres niveles ensayados, 12 ppm produjo el mayor crecimiento cultivable, y el rango de tamaños de colonia fue el más amplio. La morfología de las colonias en un solo medio sugiere una comunidad que cambia de forma, pero no constituye una medición de la diversidad funcional, que requeriría secuenciación del ARNr 16S. Tampoco el más alto de tres puntos convierte a 12 ppm en un óptimo: tres niveles y un solo ensayo no permiten localizarlo.

3. Grupo de control (8 ppm) – Potencial limitado

Placa de agar del grupo de control sin tratar, a 8 ppm: el menor número de colonias, predominantemente grandes.
8 ppm, control sin tratar: el menor número de colonias, predominantemente grandes.

Recuento de CFU: 9.100 (el más bajo de los tres niveles ensayados)
Se observaron predominantemente colonias grandes, con ausencia de especies más pequeñas y de rápido crecimiento.

Interpretación: La menor disponibilidad de oxígeno parece limitar la expansión de los aerobios facultativos, y deja la placa dominada por colonias de crecimiento más lento. En este medio, el control produjo tanto el menor número de colonias como el rango de tamaños más estrecho. Eso describe lo que creció en una placa bajo un conjunto de condiciones, no la estructura del microbioma en su conjunto.

Incubadora con los tubos de dilución seriada y las muestras correspondientes en placas de agar.
Incubadora, diluciones seriadas y muestras correspondientes en placas de agar.

Conclusión

Este ensayo preliminar muestra que el oxígeno disuelto modificó tanto el número de colonias cultivables como el rango de tamaños de colonia en la placa. El cambio no fue proporcional al oxígeno.

  • Alto nivel de oxígeno disuelto (24 ppm): produjo más crecimiento que el control, pero menos colonias que 12 ppm; el recuento no siguió aumentando con el oxígeno.
  • OD medio (12 ppm): produjo el recuento más alto de los tres niveles ensayados y el rango de tamaños de colonia más amplio. Eso no equivale a un óptimo; tres puntos y un solo ensayo no permiten localizarlo.
  • Bajo nivel de oxígeno disuelto (8 ppm): produjo el recuento más bajo, favoreciendo a las colonias de crecimiento lento.

Dado que el nivel más alto ensayado devolvió menos colonias que el nivel intermedio, la lectura prudente de este ensayo es que la comunidad se reorganizó en lugar de simplemente crecer.

Recuentos de colonias cultivables por nivel de oxígeno disuelto Gráfico de barras. 8 ppm, control sin tratar: 9.100 UFC por mililitro. 12 ppm con nanoburbujas: 24.200. 24 ppm con nanoburbujas: 12.700. El nivel más alto ensayado devolvió menos colonias que el intermedio, de modo que el recuento no sigue subiendo con el oxígeno. 0 5k 10k 15k 20k 25k UFC/mL 8 ppm — control sin tratar: 9.100 CFU/mL 9.100 8 ppm control sin tratar 12 ppm — con nanoburbujas: 24.200 CFU/mL 24.200 12 ppm con nanoburbujas 24 ppm — con nanoburbujas: 12.700 CFU/mL 12.700 24 ppm con nanoburbujas
Recuentos de colonias cultivables por nivel de oxígeno disuelto. Un solo ensayo, 1 mL sembrado a 10-2, contado con OpenCFU. Se representa deliberadamente con barras y no con una línea: tres niveles en un solo ensayo son tres puntos, no una curva dosis-respuesta, y el nivel intermedio superó al más alto.

Investigación futura: Si bien el recuento de CFU mide la proliferación, los estudios futuros incorporarán la secuenciación del ARNr 16S y ensayos metabólicos (cuantificación de ATP) para mapear los cambios funcionales específicos en estas comunidades.

Contexto: ¿Por qué Synganic?

El cultivo singánico combina la precisión de las sales sintéticas con los beneficios biológicos de los insumos orgánicos. Sin embargo, los compuestos orgánicos requieren oxígeno para descomponerse y volverse biodisponibles.

Normalmente, los inóculos se elaboran utilizando sistemas "Airlift". Lo que este ensayo puso a prueba es la recirculación con nanoburbujas como forma de fijar y mantener un nivel de oxígeno disuelto determinado en un tanque de mezcla: se alcanzaron y se mantuvieron 8, 12 y 24 ppm. No establece que un nivel sea mejor que otro para la zona radicular, y no mide en absoluto la resistencia a las enfermedades ni el ciclo de nutrientes. Lo que muestra es que el nivel elegido modifica la población cultivable, y que más oxígeno no fue simplemente mejor.

Ingeniería a medida

Diseñado para su proceso

Tanto si necesita una modernización sin complicaciones como una solución totalmente personalizada, nuestros sistemas modulares se adaptan a sus necesidades operativas.

Hable con un experto